Przewodnik do ćwiczeń z biochemiczno-biofizycznych podstaw rozwoju roślin

Spis treści ebooka

Przedmowa. 11
1. Wzrost i rozwój roślin . 13
1.1. Wpływ długości dnia i nocy na rozwój roślin (zjawisko fotoperiodyzmu) . . . 13
1.2. Wpływ okresu chłodu na rozwój roślin (zjawisko wernalizacji). . . . . . . . . . . . 14
1.3. Wpływ światła na wzrost roślin. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 15
1.4. Budowa nasion i typy kiełkowania. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 15
1.5. Energia i siła kiełkowania nasion. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 16
1.6. Metody biochemiczne oznaczania żywotności nasion. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 18
1.7. Przerywanie spoczynku bulw ziemniaka. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 19
2. Gospodarka wodna I . 21
2.1. Pęcznienie nasion żywych i martwych. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 21
2.2. Wpływ różnych jonów na szybkość pęcznienia nasion. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 22
2.3. Wydzielanie się ciepła podczas pęcznienia . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 23
2.4. Komórka Traubego. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 24
2.5. Plazmoliza i deplazmoliza. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 25
2.6. Pomiar potencjału osmotycznego tkanek bulwy ziemniaka
metodą wagową. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 26
2.7. Pomiar potencjału osmotycznego komórek cebuli
metodą plazmolizy granicznej. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 28
3. Gospodarka wodna II. 29
3.1. Demonstracja siły ssącej transpiracji
(mechanizm pasywny pobierania wody). . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 29
3.2. Demonstracja aktywnego mechanizmu pobierania wody przez rośliny . . . . . 30
3.3. Obserwacje mikroskopowe komórek epidermy liścia –
budowa i ruchy aparatów szparkowych. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 31
3.4. Obserwacje mikroskopowe tkanek przewodzących wodę
w epikotylu siewek grochu lub w szypułce wybranego białego kwiatu . . . . . 31
3.5. Intensywność transpiracji szparkowej i kutykularnej. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 32
3.6. Rola ochronna tkanek okrywających przed utratą wody. . . . . . . . . . . . . . . . . . 33
3.7. Pomiar intensywności transpiracji metodą wagową . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 34
3.8. Przygotowanie preparatów i obserwacja mikroskopowa
ścian komórkowych. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 36
4. Fotosynteza . 38
4.1. Ekstrakcja barwników fotosyntetycznych. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 38
4.2. Rozdział barwników fotosyntetycznych. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 39
4.3. Chemiczne właściwości barwników fotosyntetycznych. . . . . . . . . . . . . . . . . . . 41
4.4. Fizyczne właściwości barwników fotosyntetycznych . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 43
4.5. Pomiar zawartości chlorofili i karotenoidów
metodą spektrofotometrii absorpcyjnej. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 44
4.6. Produkty fotosyntezy w liściach pelargonii i cebuli . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 45
4.7. Niezbędność dwutlenku węgla dla procesu fotosyntezy . . . . . . . . . . . . . . . . . . 47
4.8. Aktywność dehydrogenazy jabłczanowej zależnej od NADPH
w roślinach typu C4 i typu C3. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 48
4.9. Przygotowanie preparatów i obserwacja mikroskopowa
struktury chloroplastów . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 50
5. Oddychanie . 52
5.1. Oznaczanie współczynnika oddechowego kiełkujących nasion. . . . . . . . . . . . 52
5.2. Wpływ temperatury na intensywność oddychania. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 53
5.3. Intensywność oddychania suchych, napęczniałych i kiełkujących nasion . . . 55
5.4. Mobilizacja materiałów zapasowych w kiełkujących nasionach. . . . . . . . . . . . 56
6. Gospodarka mineralna. 59
6.1. Pierwiastki występujące w roślinach – analiza popiołu. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 59
6.2. Wykrywanie jonów amonowych w świeżym materiale roślinnym . . . . . . . . . 61
6.3. Wykrywanie azotanów w świeżym materiale roślinnym. . . . . . . . . . . . . . . . . . 62
6.4. Aktywność reduktazy azotanowej w liściach siewek nawożonych
i nienawożonych azotanami . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 63
7. Tłuszczowce roślinne . 65
7.1. Ekstrakcja lipidów z różnego materiału roślinnego. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 65
7.2. Oznaczanie całkowitej zawartości acylo-lipidów
w ekstraktach chloroformowych . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 66
7.3. Analiza zawartości poszczególnych klas lipidów
w testowanym materiale roślinnym. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 68
8. Izolacja organelli komórkowych . 71
8.1. Izolacja frakcji mikrosomalnych z materiału roślinnego. . . . . . . . . . . . . . . . . . . 71
8.2. Izolacja chloroplastów . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 72
9. Enzymy związane z metabolizmem tłuszczowców. 75
9.1. Określanie aktywności acylotransferaz acylo-CoA:diacyloglicerol (DGAT)
we frakcjach mikrosomalnych z różnego materiału roślinnego . . . . . . . . . . . . 75
9.2. Określanie aktywności
acylotransferaz acylo-CoA:lizofosfosfatydylocholina (LPCAT)
we frakcjach mikrosomalnych z różnego materiału roślinnego . . . . . . . . . . . . 77
9.3. Określanie aktywności lipaz we frakcjach mikrosomalnych
z różnego materiału roślinnego. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 79

pokaż cały spis treści

ukryj recenzje